Пластинчатый разбрасыватель
Каталог:
Пластинчатый разбрасыватель
Что такое разбрасыватель пластин?
Разбрасыватель пластин обычно это цилиндрический стержень в качестве ручного инструмента, используемого в биологии и смежных областях для беспрепятственного распространения клеток и бактерий. культуральные чашкинапример, чашки Петри. Распределитель клеток является основным инструментом для техника распространения в микробиологии.
Типы пластинчатых разбрасывателей
L-образный стержень
Команда L-образный разбрасыватель пластин спроектирован так, чтобы свести к минимуму повреждение культуральной среды своим загнутым внутрь концом.
Т-образный пластинчатый разбрасыватель
Т-образный пластинчатый разбрасыватель обеспечивает равномерное рассеивание среды и быстрое и плавное рассеивание клеток.
Стерильный одноразовый разбрасыватель тарелок
Стерильные одноразовые разбрасыватели тарелок представляют собой стерильную упаковку, одноразовую, с безопасными и эффективными свойствами.
Пластиковый разбрасыватель ячеек / пластиковый разбрасыватель
Разбрасыватель стальных палочек
Разбрасыватель стекла
Преимущества пластинчатого разбрасывателя
а. Высококачественные материалы, включая, помимо прочего, медицинский АБС-пластик, полипропилен, нержавеющую сталь и т. д.
б. Обладает такими характеристиками, как простота использования, полные технические характеристики, чистота и гигиеничность, эргономичность и т.д.
c. Разумная конструкция с высокоточной пресс-формой.
d. Поддержка индивидуальной настройки. Поддержка наконечников для пипеток различных размеров, планшетов для глубоких лунок, ПЦР-планшетов и т. д.
Использование пластинчатого разбрасывателя
Распределительная пластина Это удобный ручной инструмент, помогающий равномерно распределить бактериальные клетки по поверхности агаровой пластины. С его помощью бактериальные клетки, взвешенные в небольшой капле жидкости, можно быстро и плавно распределить. Если концентрация бактерий низкая, процесс распространения приведет к образованию отдельных колоний. Если концентрация бактерий слишком высока, образуется сплошной «газон» из бактерий, и отдельные колонии будут неразличимы.
Этапы изготовления раскладной тарелки
а. Используйте маркер, чтобы отметить на дне чашки Петри дату, ваши инициалы и тип бактерий, которые вы распределяете. Всегда держите крышку на чашке Петри закрытой, пока не будете готовы закончить распределение. Таким образом, вы можете свести к минимуму риск заражения.
б. Важно использовать стерильная тарелка при раскладывании тарелок. Ваш разбрасыватели могут быть в индивидуальной упаковке или в пакете, и их следует открывать непосредственно перед использованием. Если расширители упакованы по отдельности, откройте их со стороны ручки. Если разбрасыватели упакованы навалом, один человек должен раздать разбрасыватели другим, когда они будут готовы их использовать. При использовании L-образная раздвижная пластинапомните, что L-образный конец не должен касаться ничего, кроме жидкого образца и агара.
c. Поместите 20 мкл разбавленной бактериальной культуры в центр чашки Петри с агаром, используя... пипетка для клеточных культур, не касаясь агара.
d. Затем следует использовать стерильная тарелка осторожно протереть поверхность агара, вращая планшет другой рукой. Будьте осторожны, чтобы не позволить распределителю вонзиться в агар. Распределение образца по всей чашке с агаром важно, так как это облегчает подсчет колоний. Вы должны продолжать намазывать до тех пор, пока жидкость не впитается в агар.
e. Очевидно, что большинство образцов бактерий не окрасятся во время процедуры. Вы не сможете увидеть бактерии, которые вы нанесли на чашку Петри, пока они не размножатся.
f. После завершения разбрасывания обработайте разбрасыватель спиртом или отбеливателем и утилизируйте его в контейнере для использованных отходов. мерный стакан. Накройте тарелку крышкой и заклейте ее края парафиновой пленкой или скотчем. Поверните культуральная пластина с ног на голову. Во время инкубации вы можете обнаружить конденсат. Если капнуть на агар, все колонии срастутся. Если он останется на крышке, то не причинит никакого вреда. Проверьте рост бактерий на чашках через 2-3 дня, если вы инкубируете при комнатной температуре. Колонии образуются быстрее, если чашки инкубируют при 37℃.
g. После того, как ваши колонии разрастутся, уделите время анализу результатов. Будьте очень осторожны, чтобы не открывать крышку и не пересчитывать колонии. Внимательно изучите форму, размер и текстуру ваших колоний. По сравнению с характеристиками исходных колоний, индивидуальные различия в форме, текстуре, размере или контуре указывают на генетические изменения в бактериях, давших начало этой колонии. После завершения операции следует продезинфицировать чашку Петри отбеливателем и утилизировать запечатанную чашку в соответствующем контейнере для отходов.
Посев бактерий на чашки с агаром
Посев бактерий на агаровые пластины — стандартная методика в биологии. Однако при посеве клеток следует соблюдать осторожность, поскольку для поддержания стерильности окружающей среды и оборудования используются открытое пламя и этанол. Тщательно продуманный подход лабораторный стол Конструкция имеет первостепенное значение: убедитесь, что спирт не находится слишком близко к открытому пламени, и что открытое пламя расположено таким образом, чтобы ограничить близость вашей руки к огню. Также крайне важно знать, как пользоваться всем противопожарным оборудованием и где оно расположено в лаборатории: это включает в себя аварийные души и огнетушители.
а. Подготовка рабочего места
а) Наденьте средства индивидуальной защиты (СИЗ), такие как резинки для волос, защитные очки, закрытую обувь, огнестойкие лабораторные халаты и любое другое необходимое оборудование. При этом снимите любую одежду или личные вещи, которые могут представлять особую опасность. Например, свободную и свисающую одежду, украшения или любые синтетические ткани, которые могут расплавиться или загореться при пожаре и вызвать несчастный случай. Это связано с тем, что наличие латекса может значительно увеличить тяжесть случайных ожогов, так же как и плавление синтетических тканей. Просто вымойте руки теплой водой с мылом, чтобы удалить возможные загрязнения.
б) Очистите свой рабочий стол и уберите из непосредственной рабочей зоны предметы, не имеющие отношения к эксперименту, особенно легковоспламеняющиеся предметы и химические вещества.
c) При культивировании клеток в этаноле следует переливать этанол во вторичную емкость из стекла или металла, достаточно широкую, чтобы в нее можно было опустить шпатель (шпатель). Пластик не подходит, так как он расплавится при воспламенении спирта, что помешает локализации пожара. Емкость должна иметь легко заменяемую крышку, чтобы в случае воспламенения спирта можно было потушить огонь. Требуется лишь небольшое количество этанола, не более 1 см в глубину. В стандартной емкости объем должен быть менее 10 мл.
d) Вытрите остатки этанола, пролившиеся при переливании из бутылки для хранения в указанную выше емкость.
e) Расположите подставки для жидких культур, чашки Петри, емкости со спиртом. бунзеновская горелкаа также другие материалы, необходимые для посева клеток. Контейнер со спиртом следует держать как можно дальше от горелки Бунзена. Жидкие культуры и чашки Петри следует держать на разумном расстоянии, но не настолько близко, чтобы рисковать ожогами рук при работе с чашками и пробирками. Размещение культур и чашек Петри рядом с пламенем поможет поддерживать стерильную среду, используя восходящий поток воздуха, создаваемый горелкой Бунзена, для снижения риска попадания спор в чашки Петри или пробирки.
б. Посев клеток
а) Зажгите горелку Бунзена пламенем высотой 3-5 см (пламени высотой 3-5 см будет достаточно).
б) Удалите желаемую культуру из пробирка и поместить его на чашку Петри с агаром.
c) Опустите стеклянный шпатель в спирт, дайте излишкам стечь и закройте крышку емкости со спиртом.
d) Поднесите шпатель к пламени, подожгите спирт и уберите его. Медленное вращение шпателя предотвратит падение горящих капель воды при сгорании спирта.
e) Распределите культуру по чашке Петри и закройте чашку.
f) При необходимости повторите шаги 2-6.
g) По завершении работы немедленно выключите пламя и приступайте к уборке остальных материалов.
Клеточная лабораторная стерилизация
А. Фумигация формальдегидом
Формальдегид является химическим стерилизатором. Он не воспламеняется, не взрывоопасен и не вызывает коррозии металлов. Он может сочетаться с аминокислотами в белках, денатурируя белки и вызывая исчезновение активности ферментов. Поэтому его можно использовать для клеточная лабораторная стерилизация. Обычно используется для тщательной стерилизации межклеточной дезинфекции. Однако есть и недостатки, на которые следует обратить внимание:
1) Формальдегид – вредное вещество для нашего организма.
2) Циркуляция воздуха в лабораториях клеточных культур обычно очень плохая, а выделение формальдегида очень медленное и занимает одну неделю или больше.
3) Если вы хотите использовать клеточную лабораторию в чрезвычайной ситуации, вы можете нейтрализовать формальдегид в воздухе с равным количеством аммиака после стерилизации.
Б. Фильтрация воздуха
Это один из самых безопасных и эффективных методов стерилизации клеток в лаборатории, но он стоит дорого.
C. Бактерицидная УФ-лампа
УФ-стерилизация осуществляется путем облучение с помощью УФ-ламп. Ультрафиолетовый свет воздействует на клеточную ДНК, вызывая образование пиримидиновых димеров между соседними пиримидиновыми основаниями в цепи ДНК, что подавляет репликацию ДНК. Кроме того, в воздухе под воздействием ультрафиолетового излучения может образовываться озон, который также обладает определенным стерилизующим эффектом.
D. Электронный стерилизатор
Электронный стерилизатор также известен как озоновый стерилизатор. Под воздействием высоковольтного электрического поля происходит интенсивная бомбардировка электронами внутренней и внешней поверхностей. электроды Озон — это вещество, которое ионизирует воздух и превращает кислород в воздухе в озон. При комнатной температуре и давлении озон имеет нестабильную молекулярную структуру. Он быстро распадается на кислород (O2) и отдельные атомы кислорода (O); последние очень активны и могут проводить реакции окислительного разложения с мембранами бактериальных клеток и белковыми группами водорода и серы ферментов, тем самым достигая цели стерилизации путем диффузной диффузии атомов кислорода без мертвого пространства для дезинфекции. После дезинфекции остаточным избыточным атомам кислорода в пространстве потребуется всего 30-40 минут, чтобы рекомбинировать в обычные атомы кислорода (O2) без каких-либо токсичных остатков, поэтому его называют незагрязняющим дезинфицирующим средством.
Е. Дезинфицирующее средство на основе перекиси водорода и ионов серебра.
Дезинфицирующее средство с ионами серебра и перекисью водорода контактирует с пищевыми продуктами, бесцветно и не имеет запаха. Благодаря своему уникальному принципу стерилизации он может убивать все типы микроорганизмов, включая почкующиеся споры, бактериальные споры, грибковые споры, радиоактивные бактерии, ветвящиеся бациллы, дрожжи, плесень и вирусы. Принцип стерилизации ионами серебра основан на том, что ионы одновалентного серебра посредством ковалентных и лигандных связей прочно связываются с бактериальными белками, тем самым пассивируя или осаждая бактерии. Это своего рода высокоэффективный бактерицид, который можно использовать для быстрого уничтожения различных микроорганизмов или подавления микробного размножения лабораторного оборудования, а также для дезинфекции камер. Он очень широко используется для дезинфекции различных лабораторных инструментов и оборудования.
Как купить разбрасыватель пластин?
Если вы заинтересованы в нашем Пластинчатый разбрасыватель или есть какие-либо вопросы, пожалуйста, напишите по электронной почте info@antiteck.com, мы ответим вам как можно скорее.